1 MGD的研究模型

    体内研究的动物模型和体外研究的细胞或器官模型已被证明是基础研究中至关重要的工具。这些模型的应用让人们了解了更多关于睑板腺和MGD的知识。

1.1 体内模型

    MGD的理想模型应包括人类疾病的解剖特征，如腺体阻塞、导管角化和导管扩张。与人类疾病一样，可观察的特征应以慢性或进行性方式扩散影响整个眼睑。理想的情况下，MGD的 诱导成功率应该很高，所涉及的动物应该具有正常的寿命，避免过度疼痛，并且很少或几乎没有其他全身器官的参与^[10]。Eom等^[11]用烧灼法封闭了兔子的睑板腺口来诱导兔子的MGD模型，以确

定MGD是否可以增加泪膜渗透压。Miyake等^[12]则通过给HR-1无毛小鼠喂食指定含量脂质的特殊饮食来诱导形成MGD。衰老的小鼠可以用于年龄相关性MGD的研究模型^[13-15]。另外，包含不同基因敲除株的小鼠模型，如Eda mutant (Eda?/?)Tabby mice、Sod1?/? mice等，已被鉴定能诱导形成MGD，可用于MGD发病机理的研究^[15]。

1.2 体外模型

    为探究睑板腺的生理调控， Liu 等^[16]首次建立了关于维持人原代睑板腺上皮细胞的培养系统，并将其永生化，建立了人睑板腺上皮细胞(human meibomian gland epithelial cells，HMGECs)细胞系。在体外，血清会诱导人睑板腺上皮细胞的分化和中性脂质的积累，血清的诱导作用会使内质网、高尔基体和囊泡有关的基因表达显著增加^[17]，推测这会促进细胞脂质的分泌。Asano等[18]在此基础上，用人睑板腺上皮细胞系建立了3D睑板腺培养模型。在该模型下，即使不使用血清处理，HMGECs仍具有分化的能力，但仅达到分化状态，不能形成成熟的睑板腺细胞。在研究大鼠睑板腺的离子转运时，Yu等^[19]建立了新型体外原代大鼠睑板腺细胞共培养系统，将传代的大鼠睑板腺细胞在气液界面培养成平板状和在基质胶基质中培养成球体。这2个睑板腺细胞培养模型可用于睑板腺相关的离子迁移研究，并提供了离子通道在睑板腺生理作用上的解释。Maskin等^[20]在分离兔睑板腺细胞时，用胶原蛋白凝胶进行培养，建立了兔睑板腺细胞的体外培养系统，可以用来探索在细胞水平上睑脂的产生和睑板腺上皮细胞增殖和分化的调控机制。但体外的细胞系研究主要局限于睑板腺上皮细胞，无法观测到睑板腺导管的功能和病理，因此Xu等^[21]创建了一种小鼠睑板腺的新型器官培养系统，通过提供不同的培养条件，在体外培养睑板腺外植体。这样可以分别观察腺泡和导管的形态和功能变化。这种新型的器官型培养模型可用于体外研究睑板腺的病理过程。

2 睑板腺功能障碍的发病机制

2.1 睑板腺脂质构成改变在MGD中的意义

    睑板腺的主要功能是合成和分泌脂质。睑板腺分泌的睑脂是由极性脂质(磷脂)和非极性脂质(胆固醇、蜡酯、胆固醇酯)组成的。磷脂被认为是极性脂质中最重要的一类，其作用被认为是形成与泪膜的水层和疏水性脂质层的两亲性亚层^[22]。在对小鼠的研究^[23]中，成年的雄性和雌性小鼠以相似的方式合成睑脂，并且具有相同的化学组成，说明性别对成年小鼠脂质的合成影响很小。也有研究人员^[24]在MGD患者与水液分泌不足型干眼患者的睑脂成分比较中发现睑板腺脂肪酸的成分发生了改变，其中MGD患者中支链脂肪酸含量显著升高，而饱和脂肪酸含量则减少，主要为棕榈酸和硬脂酸的含量较低。支链脂肪酸的增加说明了睑板腺分泌的脂质中有含有更多的非极性脂质。这些差异可能会对泪膜脂质层的流动性和稳定性产生影响。因此，睑板腺脂肪酸成分的改变，特别是支链脂肪酸的增加，可能是睑板腺功能障碍的标志。睑脂成分的改变也会引起相应的临床症状。在对睑脂中的鞘磷脂(sphingomyelin，SPL)这一成分进行研究时，有学者^[25-26]发现鞘磷脂的衍生物具有生物活性，并调节重要的细胞功能(凋亡、增殖、细胞迁移和炎症)，如神经酰胺(Cer)有促凋亡作用，鞘氨醇1 -磷酸酯(S1P)有抗凋亡作用。睑脂质量较差的患者有更少的Cer、S1P，但Cer/S1P的比例增高^[27]，说明Cer的含量相对增高，会表现出促凋亡的作用。这表明MGD的临床症状可能与SPL成分的变化相关。

2.2 各种原因引起的腺体导管阻塞

    2.2.1 炎性物质导致的导管阻塞

    中性粒细胞参与体内的急性炎症的过程^[28]。而MGD作为一种慢性炎症疾病，中性粒细胞并不直接参与MGD的形成，而是常在体内聚集成团形成中性粒细胞胞外陷阱(neutrophil extracellular traps，N ETs)，形成对细菌的抵抗能力^[29]。 研究^[30]发现：在睑缘炎患者的眼部排出液中，检测出含有聚集的嗜中性粒细胞胞外陷阱(aggregated neutrophil extracellular traps，aggNET)。MGD患者的眼泪液显示中性粒细胞趋化因子(C5a、IL-6、IL-8和IL-18)升高。C5a可以吸引和引发嗜中性粒细胞在眼表产生NETs，IL-8是由人角膜上皮细胞和角质形成细胞合成和释放的嗜中性粒细胞的另一种化学引诱剂^[31]。虽然NETs表现出一定的抗炎特性，但它们也具有堵塞睑板腺导管的风险^[30,32]。限制NETs形成的干预措施(例如PADI4抑制剂、DNase1/IL-3)是治疗MGD的候选方法^[29]。有研究^[33-34]指出：在糖尿病患者的腺泡和腺泡壁上有很多高密度阴影，这与正常人不同，提示腺泡有异常，腺泡周围可见炎性细胞浸润，表明炎症可能在糖尿病MGD病理变化的发生中起作用。

    2.2.2 过度角质化引起的导管阻塞

    角质化过度是阻塞性MGD的主要原因，会导致腺体扩张和萎缩，孔口阻塞，睑板淤滞和导管囊性扩张，从而导致继发性腺泡萎缩和腺体脱落^[35]。促炎因子IL-1β会介导小鼠睑板腺外植体中Krt1的表达增加和导管的高度角质化^[21]。Krt1作为上皮细胞完全角化的生物标志物^[36]，可以在在腺体的排泄道中被检测到。也有研究^[37]发现：在ApoE敲除小鼠中，上皮角质化标记分子K10和FABP5在小鼠睑板腺导管和腺泡细胞中表达上调，这表明在患有高脂血症老鼠的睑板腺中发生了角化过度。

2.3 脂质形成相关分子PPAR-γ和SREBPs的表达丧失

    过氧化物酶增殖物激活受体 ( peroxisome proliferator-activated receptor，PPAR)是一类配体激活的核转录因子超家族成员。PPAR包括PPAR-α、PPAR-β和PPAR-γ三种表型，PPAR-γ亚型是研究最多的受体，被认为是脂肪形成和脂肪细胞分化的关键调节剂^[38]。研究^[39]表明：在老年小鼠中，PPAR-γ受体信号的改变会引起相应的脂质合成和腺体萎缩，这可能为年龄相关性睑板腺功能障碍的发生打下了基础。同样，也有研究^[13-14]发现：在衰老小鼠的睑板腺中，脂质敏感性核受体PPAR-γ的表达减少。这些研究表明了睑板腺中的脂质合成受到PPAR-γ核转录因子的调节，如果PPAR-γ的表达丧失，则会产生脂质合成减少，导致年龄相关性睑板腺功能障碍。PPAR-γ的激动剂，如噻唑烷二酮^[40]和罗格列酮^[13,40-41]分别增加了糖尿病患者的皮脂产生和皮脂细胞培养物中的脂质产生。此外，IL-4可以磷酸化STAT6并相应激活PPAR-γ信号通路，从而增加睑板腺细胞中脂质的合成^[42]。这些可能为睑板腺功能障碍提供了新的思路。

    胆固醇调节元件结合蛋白(sterol-regulator y element binding proteins，SREBPs)是位于细胞内质网中的胆固醇敏感器，通过Insig-Srebp-Scap途径对细胞内胆固醇进行反馈调节。脂肪生成的2种关键酶，即ATP-柠檬酸裂合酶和乙酰辅酶A合酶的mRNA水平会被雄激素所上调^[43]。且这2种酶都被证实存在于睑板腺之中^[43]。雄激素对这2种脂肪生成关键酶活性的调节至少部分是通过SREBPs转录因子的作用来介导的^[44]。相应地，高糖会降低SREBP-1和胰岛素样生长因子受体1(insulin-like growth factor-1 receptor，IGF-1R)在人类睑板腺上皮细胞中的水平^[45]。IGF-1可促进HMEGCs的分化和脂质蓄积，同时也可促进SREBP-1的水平^[46]。IGF-1R的减少会导致相应的IGF-1也无法发挥作用。这表明高葡萄糖对HMGECs有毒性，胰岛素抵抗/缺乏和高血糖对HMGECs有害，并且II型糖尿病是MGD的危险因素。最近一项新研究^[47]发现Hedgehog信号通路参与调节小鼠睑板腺上皮细胞的增殖和分化。该研究通过作用于Hedehog的受体——Smoothened，发现Smoothened的拮抗剂(环巴胺)会促进SREBPs的表达和脂质的产生，而Smoothened的激动剂抑制SREBPs的表达和脂质的蓄积。Hedgehog信号通路似乎在小鼠睑板腺上皮细胞的增殖和分化中起重要作用。SREBPs作为脂质生成调节的关键因子，而IGF-1和Smoothened拮抗剂能促进其表达，从而促进脂质的产生和蓄积。这可能为治疗睑板腺功能障碍提供了潜在的治疗方法。

2.4 脂质介质EPA的增加

    研究^[48]发现：在MGD患者中，脂质介质水平有所增加。脂质介质是小的、具有生物活性的信号脂质，参与一般性炎症以及眼表炎症^[49]。不同的脂质介质可用于评估不同方面的眼表疾病，如5-羟基二十碳四烯酸、白三烯和18-羟基二十碳五烯，这3种脂质介质能够预测睑板腺的临床梗阻，可能提示有蒸发型干眼或MGD^[48]。二十碳五烯酸(eicosapentaenoic acid，EPA)也是参与眼表炎症的重要介体^[48]。二十碳五烯酸^[50]会上调与脂质合成和诱导细胞周期退出的相关基因的表达来促进脂质合成和细胞分化。

2.6 氧化应激反应

    Bu等^[37]认为MGD可能与脂质代谢有关。作者假设腺泡细胞中过多的脂质蓄积可能诱导了活性氧的产生。在后续对ApoE被敲除小鼠的睑板腺的研究中，作者发现了氧化应激标志物3-NT、4-HNE和NOX-4的表达相对增加，证实了氧化应激的存在。氧化应激可以造成细胞损伤继而引起组织发生炎症反应。所以脂质氧化可能是导致载脂蛋白E基因(ApoE)被敲除小鼠发生MGD的另一种致病机制。氧化应激也可以调节PPAR- γ的表达^[57]。在该研究中也检测到PPAR-γ的下调。相应的使用PPAR-γ激动剂罗格列酮可维持相对健康的眼表状况。因此，作者认为PPAR-γ激动剂可以通过调节睑板腺组织的氧化应激对高脂血症引起的MGD具有治疗作用。

2.7 CD147的丢失

    CD147是一种跨膜蛋白，可通过诱导基质金属蛋白酶(matrix metalloproteinase，MMP)来促进组织重塑，从而调节睑板腺细胞的分化和活性。MMP活性的稳定对维持眼表健康来说至关重要，MMP失衡则会产生相应的疾病和炎症^[58]。研究^[59]发现：CD147沿着基底细胞定位，并存在于由腺泡分化而来的睑板腺细胞中的离散膜结构域内。在CD147敲除小鼠的睑板腺中，上睑板和下睑板中的睑板腺数量明显减少。该研究数据表明，在睑板细胞中的MMP的活性取决于CD147，并认为CD147在维持睑板腺正常发育和功能中发挥一定的作用。此外，作者表明在小鼠中CD147的靶向缺失会导致睑板腺畸形，并在体内损害睑板细胞功能。

2.8 色素上皮衍生因子的表达降低

    证据^[60]表明：在衰老的人和小鼠的睑板腺中，细胞增殖在很大程度上减少了，这与组织损失和总的细胞数量减少有关。睑板腺中，祖细胞的数量在老年小鼠中也大大减少了^[61]。祖细胞是形成腺泡基底层并随后成为产生脂质的成熟睑板腺细胞的关键来源^[62]。研究^[63]表明：色素上皮衍生因子(pigment epithelium-derived factor，PEDF)在腺泡基底细胞中的表达高于分化的腺泡细胞，老年小鼠的基础PEDF水平显著降低，表明PEDF在年龄相关性MGD中起关键作用。证明PEDF能够通过诱导基底细胞增殖来有效地恢复衰老小鼠的睑板腺功能，从而支持睑板腺组织的快速更新需求。这提供了一种新的见解，即基底细胞增殖的诱导可能是一种促进年龄相关性MGD中睑板腺再生的新方法。

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